معلومة

Mesoderm vs Mesenchyme - ما الفرق؟

Mesoderm vs Mesenchyme - ما الفرق؟


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

ينص كتابي في علم الأجنة على أن الأديم المتوسط ​​يمكن أن يتواجد على هيئة نسيج متوسط ​​أو ظهارة. لست متأكدًا مما تعنيه "الظهارة". هنا اقتباس للسياق:

يمكن أن يكون الأديم المتوسط ​​الجسدي والحشوي والجسدي عبارة عن ظهارة مؤقتة. تتحول الظهارة المؤقتة إلى اللحمة المتوسطة الثانوية

ماذا يعني هذا الاقتباس؟


اللحمة المتوسطة هي شبكة النسيج الضام الجنيني في الأديم المتوسط. تتشكل منه الأنسجة الضامة في الجسم وكذلك الأوعية الدموية والأوعية الليمفاوية. لذلك فهو جزء من الأديم المتوسط


محاضرة - تطوير الأديم المتوسط

بعد أن وصلنا الآن إلى الأسبوع الثالث من التطوير ، سنبدأ الآن في النظر بشكل منفصل إلى الطبقات الجرثومية الثلاث العابرة (الأديم الظاهر والأديم المتوسط ​​والأديم الباطن) التي تكونت من خلال عملية تكوين المعدة. بدايةً من طبقة الأديم المتوسط ​​، طبقة النسيج الضام الجنيني الأوسط (اللحمة المتوسطة). عابر من حيث الهياكل المؤقتة التي ستصبح شيئًا آخر في وقت لاحق في التنمية.


Mesoderm في البداية تشكل طبقة خلوية متعددة الطبقات تفصل بين الأديم الظاهر والأديم الباطن ، كما يقع الأديم المتوسط ​​خارج الجنين أيضًا الأديم المتوسط ​​خارج الجنين (مغطاة في محاضرة المشيمة). سيشكل الأديم المتوسط ​​الجنيني معظم الأنسجة الضامة والعضلات البالغة.


في نهاية الأسبوع 3 ، تبدأ هذه الطبقة في "التقسيم" إلى مكونات عابرة مختلفة بناءً على موقعها داخل الطبقة والإشارات التي تتلقاها الخلايا. يمكن أن تكون عملية التقسيم هذه إما من حيث تمايز الخلايا أو هيكلية. ستصف هذه المحاضرة هذه المناطق الأولية والأنسجة التي ستتشكل في النهاية. لاحظ أن المحاضرات اللاحقة (العضلات والهيكل العظمي والأطراف والأغشية والقلب) ستعيد النظر في هذه الأنسجة لاحقًا في مرحلة التطور.


تحرير التعريف

بينما كانت الشروط الخلايا الجذعية الوسيطة (MSC) و خلية انسجة نخاع العظم تم استخدامها بالتبادل لسنوات عديدة ، ولا يعتبر أي من المصطلحين وصفيًا بشكل كافٍ:

    هو نسيج ضام جنيني مشتق من الأديم المتوسط ​​والذي يتمايز إلى نسيج دموي ونسيج ضام ، في حين أن الخلايا الجذعية السرطانية لا تتمايز إلى خلايا مكونة للدم. [5] هي خلايا نسيج ضام تشكل البنية الداعمة التي تتواجد فيها الخلايا الوظيفية للنسيج. في حين أن هذا وصف دقيق لوظيفة واحدة من MSCs ، فإن المصطلح يفشل في نقل الأدوار المكتشفة حديثًا نسبيًا لـ MSCs في إصلاح الأنسجة. [6]
  • يشمل المصطلح الخلايا متعددة القدرات المشتقة من الأنسجة الأخرى غير النخاعية ، مثل المشيمة ، [7] دم الحبل السري ، الأنسجة الدهنية ، العضلات البالغة ، سدى القرنية [8] أو اللب السني للأسنان اللبنية (اللبنية). [9] لا تملك الخلايا القدرة على إعادة تكوين العضو بأكمله.

تحرير الصرف

تتميز الخلايا الجذعية الوسيطة من الناحية الشكلية بجسم خلية صغير مع عمليات خلوية قليلة طويلة ورقيقة. يحتوي جسم الخلية على نواة كبيرة مستديرة ذات نواة بارزة ، تحيط بها جزيئات كروماتين مشتتة بدقة ، مما يعطي النواة مظهرًا واضحًا. يحتوي الجزء المتبقي من جسم الخلية على كمية صغيرة من جهاز جولجي وشبكة إندوبلازمية خشنة وميتوكوندريا ومتعددة الريبوزومات. الخلايا ، التي تكون طويلة ورقيقة ، منتشرة على نطاق واسع والمصفوفة المجاورة خارج الخلية مأهولة ببعض الألياف الشبكية ولكنها خالية من الأنواع الأخرى من ألياف الكولاجين. [10] [11] يمكن تصور هذه السمات المورفولوجية المميزة للخلايا الجذعية الوسيطة بدون ملصق باستخدام التصوير بالخلايا الحية.

تحرير نخاع العظام

كان نخاع العظام هو المصدر الأصلي للخلايا الجذعية الوسيطة ، [12] ولا يزال الأكثر استخدامًا. لا تساهم هذه الخلايا الجذعية لنخاع العظم في تكوين خلايا الدم وبالتالي لا تعبر عن علامة الخلايا الجذعية المكونة للدم CD34. يشار إليها أحيانًا باسم الخلايا الجذعية اللحمية لنخاع العظام. [13]

تحرير خلايا الحبل

يمكن الحصول على MSCs الأصغر والأكثر بدائية من أنسجة الحبل السري ، وهي هلام وارتون ودم الحبل السري. ومع ذلك ، تم العثور على MSCs بتركيز أعلى بكثير في هلام وارتون مقارنة بدم الحبل السري ، وهو مصدر غني للخلايا الجذعية المكونة للدم. الحبل السري متاح بعد الولادة. عادة ما يتم التخلص منها ولا تشكل أي خطر على تحصيلها. قد تكون هذه الخلايا الجذعية الوسيطة مصدرًا مفيدًا للخلايا الجذعية الوسيطة للتطبيقات السريرية نظرًا لخصائصها البدائية ومعدل نموها السريع. [14]

وهذه لها مزايا عديدة على الخلايا الجذعية السرطانية المشتقة من نخاع العظم. يمكن الحصول على MSCs المشتقة من الأنسجة الدهنية (AdMSCs) ، بالإضافة إلى كونها أسهل وأكثر أمانًا للعزل من MSCs المشتقة من نخاع العظم ، بكميات أكبر. [12] [15]

تحرير الخلايا المولارية

يعتبر برعم الأسنان النامي للضرس الثالث الفك السفلي مصدرًا غنيًا للخلايا الجذعية الوسيطة. في حين يتم وصفها بأنها متعددة القدرات ، فمن الممكن أن تكون متعددة القدرات. في نهاية المطاف يشكلون المينا والعاج والأوعية الدموية ولب الأسنان والأنسجة العصبية. هذه الخلايا الجذعية قادرة على التمايز إلى خلايا غضروفية وخلايا عضلية للقلب وخلايا صباغية وخلايا شبيهة بخلايا الكبد في المختبر. [9]

تحرير السائل الأمنيوسي

توجد الخلايا الجذعية في السائل الأمنيوسي. ما يصل إلى 1 من 100 خلية يتم جمعها أثناء بزل السلى هي خلايا جذعية متعددة القدرات. [16]

قدرة التفاضل تحرير

تتمتع MSCs بقدرة كبيرة على التجديد الذاتي مع الحفاظ على تعدد طاقاتها. تشير الأعمال الحديثة إلى أن β-catenin ، من خلال تنظيم EZH2 ، هو جزيء مركزي في الحفاظ على "جذوع" MSC's. [17] الاختبار القياسي لتأكيد تعدد القدرات هو تمايز الخلايا إلى بانيات العظم والخلايا الشحمية والغضروفية وكذلك الخلايا العضلية.

وقد لوحظ أن الخلايا الجذعية السرطانية تتمايز إلى خلايا تشبه الخلايا العصبية ، [18] ولكن لا يزال هناك شك حول ما إذا كانت الخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية الوسيطة تعمل أم لا. [19] تختلف الدرجة التي ستتميز بها الثقافة بين الأفراد وكيف يتم إحداث التمايز ، على سبيل المثال ، الكيميائية مقابل الميكانيكية [20] وليس من الواضح ما إذا كان هذا الاختلاف ناتجًا عن كمية مختلفة من الخلايا السلفية "الحقيقية" في الثقافة أو قدرات التمايز المتغيرة لأسلاف الأفراد. من المعروف أن قدرة الخلايا على التكاثر والتمايز تتناقص مع تقدم عمر المتبرع ، وكذلك الوقت الذي تقضيه في المزرعة. وبالمثل ، لا يُعرف ما إذا كان هذا بسبب انخفاض في عدد MSCs أو تغيير في MSCs الحالية. [ بحاجة لمصدر ]

تحرير التأثيرات المناعية

MSCs لها تأثير على الخلايا المناعية الفطرية والمحددة. تنتج الخلايا الجذعية السرطانية العديد من الجزيئات المعدلة للمناعة بما في ذلك البروستاغلاندين E2 (PGE2) ، [21] أكسيد النيتريك ، [22] indoleamine 2،3-dioxygenase (IDO) ، interleukin 6 (IL-6) ، وعلامات سطحية أخرى مثل FasL ، [23] PD-L1 و PD-L2. [24]

MSCs لها تأثير على البلاعم ، العدلات ، الخلايا القاتلة الطبيعية ، الخلايا البدينة والخلايا التغصنية في المناعة الفطرية. MSCs قادرة على الهجرة إلى موقع الإصابة ، حيث تستقطب من خلال الضامة PGE2 في النمط الظاهري M2 الذي يتميز بتأثير مضاد للالتهابات. [25] علاوة على ذلك ، يثبط PGE2 قدرة الخلايا البدينة على إزالة الحبيبات وإنتاج TNF-α. [26] [27] يتم منع انتشار الخلايا القاتلة الطبيعية ونشاطها السام للخلايا بواسطة PGE2 و IDO. تقلل MSCs أيضًا من التعبير عن مستقبلات الخلايا القاتلة الطبيعية - NKG2D و NKp44 و NKp30. [28] تمنع الخلايا الجذعية السرطانية التوهج التنفسي وموت الخلايا المبرمج للعدلات عن طريق إنتاج السيتوكينات IL-6 و IL-8. [29] تم منع التمايز والتعبير عن الواسمات السطحية للخلايا المتغصنة بواسطة IL-6 و PGE2 من الخلايا الجذعية السرطانية. [30] تعتمد التأثيرات المثبطة للمناعة لـ MSC أيضًا على IL-10 ، ولكن ليس من المؤكد ما إذا كانت تنتجها بمفردها ، أو تحفز الخلايا الأخرى فقط على إنتاجها. [31]

تعبر MSC عن جزيئات الالتصاق VCAM-1 و ICAM-1 ، والتي تسمح للخلايا اللمفاوية التائية بالالتصاق بسطحها. ثم يمكن أن يؤثر عليها MSC بواسطة الجزيئات التي لها نصف عمر قصير ويكون تأثيرها في المنطقة المجاورة مباشرة للخلية. [22] وتشمل هذه أكسيد النيتريك ، [32] PGE2 ، HGF ، [33] وتفعيل مستقبل PD-1. [34] تقلل الخلايا الجذعية الوسيطة من تكاثر الخلايا التائية بين مرحلتي دورة الخلية G0 و G1 [35] وتقليل التعبير عن IFNγ لخلايا Th1 مع زيادة التعبير عن IL-4 لخلايا Th2. [36] تمنع الخلايا الجذعية الوسيطة أيضًا تكاثر الخلايا الليمفاوية B بين مرحلتي دورة الخلية G0 و G1. [34] [37]

خصائص مضادات الميكروبات تحرير

تنتج MSCs العديد من الببتيدات المضادة للميكروبات (AMPs) بما في ذلك cathelicidin LL-37 البشري ، [38] β-defensins ، [39] ليبوكالين 2 [40] وهيبسيدين. [41] هذه الببتيدات ، جنبًا إلى جنب مع إنزيم indoleamine 2،3-dioxygenase (IDO) ، هي المسؤولة عن النشاط المضاد للبكتيريا واسع الطيف في الخلايا الجذعية السرطانية. [42]

يمكن تنشيط الخلايا الجذعية الوسيطة وتعبئتها إذا لزم الأمر ، لكن كفاءتها ، في حالة إصلاح العضلات على سبيل المثال ، منخفضة جدًا حاليًا. قد توفر المزيد من الدراسات في آليات عمل MSC سبلًا لزيادة قدرتها على إصلاح الأنسجة. [43] [44]

تحرير أمراض المناعة الذاتية

الدراسات السريرية التي تبحث في فعالية الخلايا الجذعية اللحمية في علاج الأمراض هي قيد التطوير الأولي ، لا سيما لفهم أمراض المناعة الذاتية ، ومرض الكسب غير المشروع مقابل المضيف ، ومرض كرون ، والتصلب المتعدد ، والذئبة الحمامية الجهازية والتصلب الجهازي. [45] [46] اعتبارًا من عام 2014 ، لا يوجد بحث سريري عالي الجودة يقدم دليلًا على الفعالية ، وتوجد العديد من التناقضات والمشكلات في طرق البحث. [46]

أمراض أخرى تحرير

جاءت العديد من النجاحات السريرية المبكرة باستخدام الزرع في الوريد في أمراض جهازية مثل الكسب غير المشروع مقابل مرض المضيف وتعفن الدم. قد يكون الحقن المباشر أو وضع الخلايا في موقع يحتاج إلى إصلاح هو الطريقة المفضلة للعلاج ، حيث يعاني توصيل الأوعية الدموية من "تأثير المرور الرئوي الأول" حيث يتم عزل الخلايا المحقونة في الوريد في الرئتين. [47]

تحرير الكشف

اقترحت الجمعية الدولية للعلاج الخلوي (ISCT) مجموعة من المعايير لتحديد MSCs. يمكن تصنيف الخلية على أنها MSC إذا أظهرت خصائص ملاصقة للبلاستيك في ظل ظروف الثقافة العادية ولديها شكل يشبه الخلايا الليفية. في الواقع ، يجادل البعض بأن الخلايا الجذعية السرطانية والخلايا الليفية متطابقة وظيفيًا. [48] ​​علاوة على ذلك ، يمكن أن تخضع الخلايا الجذعية السرطانية للتمايز العظمي ، والشحماني ، والغضروفي خارج الجسم الحي. تعبر MSCs المستنبتة أيضًا على سطحها CD73 و CD90 و CD105 ، بينما تفتقر إلى تعبير علامات CD11b و CD14 و CD19 و CD34 و CD45 و CD79a و HLA-DR. [49]

لا تزال غالبية تقنيات الاستزراع الحديثة تتبع نهج الخلايا الليفية المكونة للمستعمرة (CFU-F) ، حيث يتم طلاء نخاع العظم الخام غير المنقى أو الخلايا أحادية النواة المنقاة من نخاع العظم مباشرة في ألواح أو قوارير زراعة الخلايا. الخلايا الجذعية الوسيطة ، ولكن ليس خلايا الدم الحمراء أو أسلاف تكوين الدم ، تكون ملتصقة بزراعة الأنسجة البلاستيكية في غضون 24 إلى 48 ساعة. ومع ذلك ، فقد حدد منشور واحد على الأقل مجموعة من MSCs غير الملتصقة التي لم يتم الحصول عليها بواسطة تقنية الطلاء المباشر. [50]

تسمح الطرق الأخرى القائمة على قياس التدفق الخلوي بفرز خلايا نخاع العظم لعلامات سطحية محددة ، مثل STRO-1. [51] خلايا STRO-1 + بشكل عام أكثر تجانسًا ولديها معدلات التزام أعلى ومعدلات انتشار أعلى ، لكن الاختلافات الدقيقة بين خلايا STRO-1 + و MSCs ليست واضحة. [52]

كما تم استخدام طرق الاستنفاد المناعي باستخدام تقنيات مثل MACS في الاختيار السلبي للخلايا الجذعية الوسيطة. [53]

يعد تكميل الوسائط القاعدية بمصل بقري الجنين أو محللة الصفائح الدموية البشرية أمرًا شائعًا في ثقافة MSC. قبل استخدام محللات الصفائح الدموية لثقافة MSC ، يوصى بعملية إبطال نشاط الممرض لمنع انتقال العوامل الممرضة. [54]

بحث جديد بعنوان زرع الأجسام الشبه الكروية للخلايا الجذعية الوسيطة البشرية المشتقة من ESC يخفف من هشاشة العظام العفوية في قرود المكاك الريسوس [55] تم استخدام مواد كيميائية مختلفة وطرق بما في ذلك التشعيع بالليزر منخفض المستوى لزيادة تكاثر الخلايا الجذعية. [56]

في عام 1924 ، استخدم عالم التشكل الروسي المولد ألكسندر أ. ماكسيموف (بالروسية: Александр Александрович Максимов) نتائج نسيجية واسعة النطاق لتحديد نوع فريد من الخلايا السليفة داخل اللحمة المتوسطة التي تتطور إلى أنواع مختلفة من خلايا الدم. [57]

كشف العالمان إرنست إيه. [58] [59] أن خارج الجسم الحي تم الإبلاغ لاحقًا عن اختبار لفحص إمكانات الاستنساخ لخلايا النخاع متعددة القدرات في السبعينيات من قبل فريدنشتاين وزملاؤه. [60] [61] في نظام الفحص هذا ، تمت الإشارة إلى الخلايا اللحمية على أنها خلايا ليفية مكونة للمستعمرة (CFU-f).

تم الانتهاء من التجارب السريرية الأولى للـ MSCs في عام 1995 عندما حُقنت مجموعة من 15 مريضًا بمرض MSCs مثقف لاختبار سلامة العلاج. منذ ذلك الحين ، تم البدء في أكثر من 200 تجربة إكلينيكية. ومع ذلك ، لا يزال معظمهم في مرحلة اختبار الأمان. [7]

كشفت التجارب اللاحقة مرونة خلايا النخاع وكيف يتم تحديد مصيرها من خلال الإشارات البيئية. يمكن أن يؤدي استنبات خلايا انسجة النخاع في وجود محفزات عظمية مثل حمض الأسكوربيك والفوسفات غير العضوي والديكساميثازون إلى تعزيز تمايزها في بانيات العظم. في المقابل ، فإن إضافة تحويل عامل النمو بيتا (TGF-b) يمكن أن يحفز علامات الغضروفية. [ بحاجة لمصدر ]

في الآونة الأخيرة ، كان هناك بعض الجدل حول استخدام مصطلح "الخلايا الجذعية الوسيطة" وما الذي يشكل المعنى الأكثر صحة علميًا لاختصار MSC. تحتوي معظم خلايا اللحمة المتوسطة أو محضرات "MSC" على جزء أقلية من الخلايا الجذعية الحقيقية متعددة القدرات ، في حين أن معظم الخلايا عبارة عن انسجة بطبيعتها. اقترح الدكتور أرنولد كابلان ، أحد الرواد في مجال MSC ، إعادة تسمية الخلايا الجذعية السرطانية لتعني "خلايا الإشارات الطبية". [62] في مجال الخلايا الجذعية ، أصبحت MSC أكثر شيوعًا الآن للإشارة إلى "اللحمة اللحمية المتوسطة / الخلايا الجذعية" بسبب الطبيعة غير المتجانسة للمستحضرات الخلوية.

هناك أيضًا قلق متزايد بشأن تسويق وحقن الخلايا الجذعية الوسيطة والخلايا الجذعية الوسيطة في المرضى من خلال العيادات الربحية التي تفتقر إلى البيانات الدقيقة لدعم هذه الاستخدامات السريرية. [63] [64]


بعض النتائج الأخيرة

  • تتفاعل إشارات BMP و FGF مع نمط الأديم المتوسط ​​من خلال التحكم في نشاط عامل نسخ اللولب الحلزوني الأساسي& # 912 & # 93 "الطبقة الجرثومية الوسيطة منقوشة في أنواع فرعية نسيطة الوحشية بواسطة عوامل تأشير بما في ذلك BMP و FGF. كيف يتم دمج هذه المسارات للحث على مصائر محددة للخلايا المتوسطة الوحشية غير مفهومة جيدًا. استخدمنا الأديم المتوسط ​​المشتق من أسلاف الجلد العصبي بعد المعدة ( NMPs) ، التي تخضع لقرار تصميم ثنائي جانبي جانبي ، كنموذج مبسط لفهم كيفية عمل FGF جنبًا إلى جنب مع BMP لنقل المصير الأوسط الجانبي. باستخدام الزرد والفأر NMPs ، نحدد آلية محفوظة تطوريًا لـ BMP و FGF بوساطة نمط الأديم المتوسط ​​الجانبي الذي يحدث من خلال تعديل نشاط عامل النسخ الأساسي الحلزوني الحلزوني الحلزوني (bHLH). يضفي BMP المصير الجانبي من خلال تحريض بروتينات اللولب الحلزوني الحلزوني (HLH) ، التي تستعد لعوامل نسخ bHLH ، الناتجة عن إشارات FGF ، التي تحدد المصير الإنسي. يوضح تحليلنا لتطور أسماك الزرد أن نشاط bHLH مسؤول عن الزخرفة المتوسطة الوحشية لـ t هو طبقة جرثومية متوسطية بالكامل ".
  • يوجه BRACHYURY أستلة هيستون إلى المواقع المستهدفة أثناء تطور الأديم المتوسط& # 913 & # 93 "تلعب عوامل نسخ T-box أدوارًا أساسية في جوانب متعددة من تطور الفقاريات. هنا ، نوضح أن الوظيفة التعاونية لـ BRACHYURY (T) مع الإنزيمات المعدلة للهيستون ضرورية للتكوين الجنيني للفأر. طفرة نقطة واحدة (TY88A ) يؤدي إلى انخفاض أستيل هيستون 3 ليسين 27 (H3K27ac) في المواقع المستهدفة T ، بما في ذلك موضع T ، مما يشير إلى أن T ينظم تلقائيًا الحفاظ على تعبيره ووظائفه عن طريق توظيف تعديلات كروماتين متساهلة إلى معززات مفترضة أثناء مواصفات الأديم المتوسط. يتوسط توظيف H3K27ac من خلال التفاعل الجسدي مع p300. بالإضافة إلى ذلك ، قررنا أن T يلعب دورًا بارزًا في مواصفات أنواع الخلايا المكونة للدم والبطانة. تتعطل برامج التعبير الجيني المكونة للدم والبطانة في الأجنة الطافرة TY88A ، مما يؤدي إلى خلل في تمايز أسلاف المكونة للدم. نظهر أن هذا الدور من T يتم توسطه ، على الأقل جزئيًا ، من خلال هتاف تفعيل محسن Lmo2 البعيد. " دم

يسمح هذا الجدول بإجراء بحث آلي بواسطة الكمبيوتر في قاعدة بيانات PubMed الخارجية باستخدام الارتباط النصي "مصطلح البحث" المدرج.

  • يتطلب هذا البحث الآن ارتباطًا يدويًا حيث تم تعطيل ملحق PubMed الأصلي.
  • قائمة المراجع المعروضة لا تعكس أي اختيار تحريري للمواد على أساس المحتوى أو الصلة.
  • تظهر المراجع أيضًا في هذه القائمة بناءً على تاريخ عرض الصفحة الفعلي.


تتضمن المراجع المدرجة في بقية صفحة المحتوى وصفحة المناقشة المرتبطة بها (المدرجة تحت العناوين الفرعية لسنة النشر) بعض التحديدات التحريرية بناءً على كل من الصلة والتوافر.

راجع أيضًا صفحة المناقشة للحصول على مراجع أخرى مدرجة حسب السنة والمراجع في هذه الصفحة الحالية.


يتكون الميزوجليا من الماء في الغالب. بخلاف الماء ، يتكون الميزوجليا من عدة مواد بما في ذلك البروتينات الليفية ، مثل البروتيوغليكان الكولاجين وكبريتات الهيباران. [1] الميزوجليا هو في الغالب لا خلوي ، [2] ولكن في كل من القراصات [3] و ctenophora [4] يحتوي الميزوجليا على حزم عضلية وألياف عصبية. تقع الخلايا العصبية والعضلية الأخرى أسفل الطبقات الظهارية. [2] يحتوي الميزوجليا أيضًا على خلايا أمبية متجولة تلعب دورًا في البلعمة للحطام والبكتيريا. تحارب هذه الخلايا أيضًا العدوى عن طريق إنتاج مواد كيميائية مضادة للبكتيريا. [5]

قد يكون الميزوجليا أرق من أي من طبقات الخلايا [6] في تجاويف الأمعاء الأصغر مثل الهيدرا أو قد تشكل الجزء الأكبر من الجسم في قنديل البحر الأكبر حجمًا. يعمل الميزوجليا كهيكل عظمي داخلي يدعم الجسم. تساعد خصائصه المرنة على استعادة الشكل بعد أن يتشوه بسبب تقلص العضلات. [7] ومع ذلك ، بدون طفو الماء لدعمه ، فإن الميزوجليا ليس صلبًا بدرجة كافية لتحمل وزن الجسم وتميل الأمعاء بشكل عام إلى التسطح ، أو حتى الانهيار عند إخراجها من الماء.

من أجل التفريق بين استخدام كلمة اللحمة المتوسطة في علم الأجنة الفقاريات (أي أنسجة غير متمايزة توجد في الأديم المتوسط ​​الحقيقي الجنيني [Ento-] والتي تُشتق منها جميع الأنسجة الضامة والأوعية الدموية وخلايا الدم والجهاز الليمفاوي والقلب) والاستخدام في علم الحيوان اللافقاري (نسيج صلب إلى حد ما ولكنه غير محكم التنظيم يتكون من مصفوفة هلامية [الميزوجليا ، بالمعنى الدقيق للكلمة] مع شوائب خلوية وليفية مختلفة ، تقع بين البشرة والأدمة المعدية) ، يفضل بعض المؤلفين استخدامها مصطلح mesoglea (بالمعنى الأوسع) بدلاً من اللحمة المتوسطة عند الإشارة إلى الطبقات الوسطى من الإسفنج والأرومات الثنائية ، مع الاحتفاظ بمصطلح اللحمة المتوسطة للمعنى الجنيني. ومع ذلك ، فإن Brusca & amp Brusca (2003) يثبطان هذا الاستخدام ، باستخدام mesoglea بمعناه الدقيق ، ويفضلون الحفاظ على كل من الحواس الجنينية والحيوانية لمصطلح اللحمة المتوسطة. [8]

  1. ^ ساراس ، إم بي مادن ، إم إي زانج ، إكس جونوار ، إس هوف ، ج.ك.هدسون ، بي جي (1991). "المصفوفة خارج الخلية (mesoglea) من Hydra vulgaris". علم الأحياء التنموي. 148 (2): 481-494. دوى: 10.1016 / 0012-1606 (91) 90266-6. بميد1743396.
  2. ^ أب
  3. جوزيفسون ، ر. (2004). "التحكم العصبي في السلوك في شقائق النعمان البحرية". مجلة البيولوجيا التجريبية. 207 (14): 2371-2372. دوى: 10.1242 / جيب .01059. بميد 15184508.
  4. ^
  5. فيرنر ، ب.شابمان ، دي إم كاترس ، سي إي (1976). "الجهاز العضلي والعصبي للمكعبات (القراصات)". اكسبرينتيا. 32 (8): 1047-1049. دوى: 10.1007 / BF01933964.
  6. ^
  7. هيرنانديز نيكيز ، إم إل (1973). "الجهاز العصبي لل ctenophores الثالث. البنية التحتية من نقاط الاشتباك العصبي". مجلة علم الخلايا العصبية. 2 (3): 249-263. دوى: 10.1007 / BF01104029. بميد9224490.
  8. ^
  9. هوتون ، دانييل إم سي سميث ، فاليري ج. (1996). "الخصائص المضادة للبكتيريا للخلايا الأميبية المعزولة من البحر شقائق النعمان الأكتينية الفروسية". النشرة البيولوجية. 191 (3): 441-451. دوى: 10.2307 / 1543017. JSTOR1543017. بميد29215925.
  10. ^
  11. كامبل ، ريتشارد د. (1976). "القضاء عن طريق هيدرا الخلالي والخلايا العصبية عن طريق الكولشيسين". مجلة علوم الخلية. 21 (1): 1-13. بميد 932105.
  12. ^
  13. كير ، دبليو إم (2012). "تنوع الهياكل العظمية الهيدروستاتيكية". مجلة البيولوجيا التجريبية. 215 (8): 1247-1257. دوى: 10.1242 / جيب 056549. PMID22442361.
  14. ^ Brusca & amp Brusca (2003) ، ص. 220.

هذه المادة في اللغات القراصات حول علم التشريح كعب. يمكنك مساعدة ويكيبيديا من خلال توسيعها.


موسوعة مشروع الجنين

اللحمة المتوسطة هي نوع من الأنسجة الحيوانية يتكون من خلايا فضفاضة مدمجة في شبكة من البروتينات والسوائل ، تسمى المصفوفة خارج الخلية. تسمح الطبيعة الفضفاضة والسائلة للحمة المتوسطة لخلاياها بالهجرة بسهولة ولعب دور حاسم في أصل وتطور الهياكل المورفولوجية خلال المراحل الجنينية والجنينية من حياة الحيوان. تؤدي اللحمة المتوسطة مباشرة إلى ظهور معظم الأنسجة الضامة في الجسم ، من العظام والغضاريف إلى الجهاز اللمفاوي والدورة الدموية. علاوة على ذلك ، فإن التفاعلات بين اللحمة المتوسطة ونوع آخر من الأنسجة ، الظهارة ، تساعد في تكوين كل عضو في الجسم تقريبًا.

على الرغم من أن معظم اللحمة المتوسطة مشتقة من الطبقة الجرثومية الجنينية الوسطى ، فإن الأديم المتوسط ​​، الطبقة الخارجية من الجرثومة المعروفة باسم الأديم الظاهر تنتج أيضًا كمية صغيرة من اللحمة المتوسطة من بنية متخصصة تسمى القمة العصبية. تعتبر اللحمة المتوسطة بشكل عام نسيجًا عابرًا في حين أنها ضرورية للتكوين أثناء التطور ، ويمكن العثور على القليل في الكائنات الحية البالغة. الاستثناء هو الخلايا الجذعية اللحمية ، والتي توجد بكميات صغيرة في نخاع العظام ، والدهون ، والعضلات ، ولب الأسنان للأسنان اللبنية.

تتشكل اللحمة المتوسطة في وقت مبكر من الحياة الجنينية. عندما تتطور الطبقات الجرثومية الأولية أثناء عملية المعدة ، تفقد مجموعات الخلايا خصائصها اللاصقة وتنفصل عن صفائح الخلايا المتصلة ، والتي تسمى الظهارة. هذه العملية ، المعروفة باسم التحول الظهاري واللحمة المتوسطة ، تؤدي إلى ظهور طبقة الأديم المتوسط ​​للجنين ، وتحدث عدة مرات خلال تطور الفقاريات الأعلى. تلعب التحولات الظهارية - اللحمية المتوسطة دورًا رئيسيًا في الانتشار الخلوي وإصلاح الأنسجة ، ويشار إليها في العديد من العمليات المرضية ، بما في ذلك تطور النسيج الضام الليفي الزائد (التليف) وانتشار المرض بين الأعضاء (ورم خبيث). تحدث العملية العكسية ، الانتقال بين اللحمة المتوسطة والظهارية ، عندما تطور الخلايا المفكوكة من اللحمة المتوسطة خصائص لاصقة وترتب نفسها في ورقة منظمة. هذا النوع من الانتقال شائع أيضًا أثناء التطور ، ويشارك في تكوين الكلى.

مفهوم اللحمة المتوسطة له تاريخ طويل ، والذي شكل فهمنا الحديث للأنسجة بعدة طرق. في عام 1879 ، وصف تشارلز سيدجويك مينوت ، عالم التشريح من كلية الطب بجامعة هارفارد في بوسطن ، ماساتشوستس ، ما أسماه mesamoeboids ، الجزء الخلوي مما سيصبح قريبًا معترف به على أنه اللحمة المتوسطة. وجد مينوت هذه الخلايا في سياق الدراسات النسيجية للأديم المتوسط. لقد فهم الخلايا المفكوكة والمتحركة في اللحمة المتوسطة باعتبارها ممثلين بدائيين للأديم المتوسط ​​، لكنه لم يعتبر هذه الخلايا نوعًا من الأنسجة. بعد عامين من اعتراف مينوت بالميزامبويدات ، صاغ أوسكار وريتشارد هيرتويج ، شقيقان وطلاب دكتوراه لإرنست هيكل في جامعة جينا في جينا ، ألمانيا ، المصطلح اللحمة المتوسطة في منشوراتهم يموت Coelomtheorie. Versucheiner Erklärung des mittleren Keimblattes (نظرية Coelom: محاولة لشرح الطبقة الجرثومية الوسطى) ، واستخدموه لوصف نوع النسيج الذي يتكون من الخلايا الأميبية التي صورها مينوت. أثبت الأخوان هيرتويج أن اللحمة المتوسطة تنشأ من الأديم المتوسط ​​، ووضعا هذه العلاقة في السياق الأوسع لتطور اللولب ، وهو تجويف جسم مملوء بالسوائل. هم يموت Coelomtheorie كما طورت فكرة أن الطبقات الجرثومية الثلاث تحافظ على هويات منفصلة وتطور أنسجة وأعضاء مميزة ، وهو مفهوم يُعرف باسم نظرية الطبقة الجرثومية.

في عام 1888 ، اقترح إن. كاتشينكو أن اللحمة المتوسطة الموجودة في منطقة الرأس نشأت من القمة العصبية ، مشتق من الأديم الظاهر ، مما يوسع بشكل فعال أصول الأنسجة إلى ما وراء طبقة جرثومية واحدة. بعد خمس سنوات ، قدمت جوليا بلات ، طالبة الدكتوراه في كلية الطب بجامعة هارفارد ، في كامبريدج ، ماساتشوستس ، أدلة تستند إلى دراساتها عن Necturus maculosus الأجنة ، وهو نوع من السمندل المائي ، والذي تطور إلى العناصر الهيكلية للأقواس الخيشومية المشتقة من الأديم الظاهر. كان منشور بلات عام 1893 ، "أصل الجلد الخارجي لغضاريف الرأس" ، واستنتاجاتها حول أصول الأديم الظاهر للحمة المتوسطة في منطقة الرأس ، وبالتالي الأنسجة الهيكلية والغضروفية للجمجمة ، تتعارض مع نظرية الطبقة الجرثومية الراسخة والأديم المتوسط أصول اللحمة المتوسطة التي دعا إليها الأخوان هرتويج في عام 1881 يموت Coelomtheorie. تم رفض النتائج التي توصل إليها بلات من قبل العديد من علماء الأجنة المعروفين الذين أيدوا نظرية تكامل الطبقات الجرثومية.

في السنوات التي أعقبت نشر بلات ، حدد العديد من علماء الأجنة أصول الأديم الظاهر للحمة المتوسطة والعناصر الهيكلية المشتقة منها في منطقة رأس الأسماك والطيور. لم تظهر الدراسات المستقلة إلا بعد مرور ما يقرب من ثلاثين عامًا على نشر بلات الأولي ، مساهمة كبيرة للأديم الظاهر في اللحمة المتوسطة. في عام 1921 ، أثناء التحقيق في حدود القمة العصبية في تكوين العقد الدماغية في أورودليسأظهر فرانسيس لانداكر ، المعروف باسم السلمندر ، من جامعة ولاية أوهايو في كولومبوس بولاية أوهايو ، أصل الأديم الظاهر من اللحمة المتوسطة في الجمجمة. تبع عمل Landacre من قبل دراسات أخرى والتي خلصت كذلك إلى مكون الأديم الظاهر من اللحمة المتوسطة. فكرة أن اللحمة المتوسطة في منطقة الجمجمة المستمدة من القمة العصبية تم إلغاؤها أخيرًا في الأربعينيات من القرن الماضي من خلال البحث المستقل لعلماء الأجنة سفين هورستاديوس في جامعة أوبسالا في أوبسالا بالسويد وجافين دي بير في الكلية الجامعية في لندن بإنجلترا.

بعد فترة وجيزة من انتهاء الجدل حول اللحمة المتوسطة للأديم الظاهر ، اندلع البحث حول دور اللحمة المتوسطة أثناء التطور. بحلول الستينيات ، أدرك علماء الأجنة أن اللحمة المتوسطة ، بالاشتراك مع الظهارة ، لعبت دورًا أساسيًا في تشكل العديد من الأعضاء أثناء نمو الجنين والجنين. تشكل التفاعلات الظهارية - اللحمية المتوسطة كل عضو من أعضاء الجسم تقريبًا ، من الشعر والغدد العرقية إلى الجهاز الهضمي والكلى والأسنان.

في عام 1969 ، صمم إدوارد كولار وجريس بيرد من جامعة شيكاغو في شيكاغو ، إلينوي ، سلسلة من التجارب لفهم كيفية عمل اللحمة المتوسطة والظهارة معًا عندما تتمايز الخلايا ، وكيف يتحد النسجان لتكوين بنى جنينية. اعتمد بحثهم على تاريخ طويل من التحقيق في تفاعلات الأنسجة أثناء التشكل ، وخاصة على عمل عام 1954 لجون كيرن في جامعة تكساس في أوستن ، تكساس ، وجون سوندرز ، في جامعة ماركيت في ميلووكي ، ويسكونسن. أدرك Cairn and Saunders أن الأديم المتوسط ​​يحمل المنبهات الحثية في التفاعلات بين الأديم المتوسط ​​والظهارة. باستخدام تطوير الأسنان كنظام نموذجي ، قدم Kollar و Baird دليلًا على أن اللحمة المتوسطة تدفع كلاً من الحث والتمايز أثناء التفاعلات الظهارية واللحمة المتوسطة ، وبالتالي فهي الأنسجة التي تضفي خصوصية بنيوية أثناء هذه التفاعلات ، أو تحدد البنية التي ستتشكل. نشر كولار وبيرد النتائج التي توصلوا إليها في عام 1969 في "تأثير حليمة الأسنان على تطور شكل الأسنان في جراثيم أسنان الفأر الجنينية" وفي عام 1970 في "تفاعلات الأنسجة في جراثيم أسنان الفأر الجنينية".

قبل وقت قصير من نشر كولار وبيرد روايتهما للتفاعلات الظهارية واللحمية المتوسطة ، اكتشف ألكسندر فريدنشتاين الخلايا الجذعية الوسيطة في الفئران (موس العضلات). في منشورات من عام 1966 حتى عام 1987 ، قدم فريدنشتاين ، بالاشتراك مع أقرانه في جامعة موسكو في موسكو ، روسيا ، أدلة من تجارب الزرع على أن الخلايا الجذعية المأخوذة من نخاع العظم يمكن أن تتمايز إلى أنسجة اللحمة المتوسطة ، مثل الدهون والعظام والغضاريف . عُرفت هذه الخلايا بالخلايا الجذعية الوسيطة ، وتم العثور عليها لاحقًا في الدم ، والغضاريف ، والهيكل العظمي ، والأنسجة الدهنية. توفر الخلايا الجذعية الوسيطة خزانًا من الخلايا الاحتياطية التي يمكن للجسم استخدامها لتجديد الأنسجة الطبيعية أو المرضية وإصلاحها. كانت قدرة الخلايا الجذعية الوسيطة على التمايز إلى أنسجة مختلفة ، والمعروفة باسم فاعلية الخلية ، سببًا للجدل في السنوات الأخيرة ، مما دفع الباحثين إلى التساؤل عما إذا كانت هذه الخلايا متعددة القدرات حقًا ، ويمكن أن تؤدي إلى ظهور أنواع متعددة من الخلايا. إن التعدد المحتمل للخلايا الجذعية الوسيطة ، بالتزامن مع وجودها في الكائنات الحية البالغة ، جعلها بديلاً جذابًا للخلايا الجذعية الجنينية للبحث في تجديد الأنسجة.

تنتشر الأبحاث الحالية حول اللحمة المتوسطة عبر العديد من المجالات البيولوجية. ومع ذلك ، ينقسم تركيز أبحاث اللحمة المتوسطة بين اهتمامات عامة: دور وتعبير الجينات الخاصة باللحمة المتوسطة أثناء التطور ، بما في ذلك العمليات المرضية ، ومواقع وقدرات الخلايا الجذعية الوسيطة. بينما لا يزال البعض يبحث في اللحمة المتوسطة على مستوى الأنسجة ، فإن التركيزين الحاليين يعكسان اتجاهًا نحو تحليل وفهم آليات المستوى الجزيئي التي تعمل من خلالها اللحمة المتوسطة أثناء التطور. بدءًا من تعريف الأخوين هيرتويج ، انتقلت أبحاث اللحمة المتوسطة من التحقيقات التشريحية في تطوير الأجنة ، إلى المساهمات الخلوية في تكوين الأعضاء وتفاعلات مستوى الأنسجة ، والآن إلى الآليات الجينية للتطور وإصلاح الأنسجة.

هناك استمرارية تاريخية في أبحاث اللحمة المتوسطة ، ولكن لا تزال هناك آثار للجدل الذي أحاط بهذا النسيج في أواخر القرن التاسع عشر. في مقالها عام 1893 الذي قدمت فيه المجتمع البيولوجي إلى أصول الأديم الظاهر من اللحمة المتوسطة في منطقة الرأس ، اقترحت جوليا بلات أيضًا تغييرًا في المصطلحات. اللحمة المتوسطة من أصول الأديم الظاهر التي حددتها بمصطلح الأديم المتوسط ​​، بينما دعت الأديم المتوسط ​​الأديم المتوسط. لا يزال المجتمع الطبي ، وخاصة علماء الأمراض ، يستخدم هذا التمييز بين مصادر اللحمة المتوسطة ، ويشير فقط إلى الأنسجة على أنها اللحمة المتوسطة إذا كانت مشتقة من الأديم المتوسط. يحافظ علماء الأمراض على التمييز لأن مصدر اللحمة المتوسطة يحدد نوع وسلوك المرض. وفي الوقت نفسه ، يميل علماء الأحياء التنموية إلى التعرف على اللحمة المتوسطة باسم واحد ، بغض النظر عن المصدر.

دراسة اللحمة المتوسطة لها تاريخ طويل ، من التعرف على اللحمة المتوسطة في إطار نظرية الطبقة الجرثومية ، إلى الجدل حول أصول اللحمة المتوسطة ، إلى الكشف عن دور اللحمة المتوسطة في التشكل وقدرتها على إنتاج الخلايا الجذعية. يرجع هذا التاريخ جزئيًا إلى حقيقة أن اللحمة المتوسطة ضرورية لنمو الجنين وتطوره ، وكذلك الحفاظ على الأنسجة الضامة في مرحلة البلوغ. تسمح الطبيعة الفضفاضة للخلايا داخل اللحمة المتوسطة للأنسجة بالتحرك وتشكيلها. أثناء التطور الجنيني ، تؤدي اللحمة المتوسطة إلى ظهور الأنسجة الضامة في الجسم ، من الغضاريف والعظام إلى الدهون والعضلات والدورة الدموية. Meanwhile, nearly every organ forms through epithelio-mesenchymal interactions, in which mesenchyme provides both the inductive stimulus and determines the path of differentiation. Although little mesenchyme remains in the body during adulthood, the final remnants of this tissue, mesenchymal stem cells, allow connective tissues to repair and regenerate.


Somitomere

In the developing vertebrate embryo, the somitomeres (أو somatomeres) [1] are cells that are derived from the loose masses of paraxial mesoderm that are found alongside the developing neural tube. In human embryogenesis they appear towards the end of the third gestational week. The approximately 50 pairs of somitomeres in the human embryo, begin developing in the cranial (head) region, continuing in a caudal (tail) direction until the end of week four.

The first seven somitomeres give rise to the striated muscles of the face, jaws, and throat. [2]

The remaining somitomeres, likely driven by periodic expression of the hairy gene, begin expressing adhesion proteins such as N-cadherin and fibronectin, compact, and bud off forming somites. The somites give rise to the vertebral column (sclerotome), associated muscles (myotome), and overlying dermis (dermatome). There are a total of 37 somite pairs at the end of the fifth week of development, after the first occipital somite and 5-7 coccygeal somites disappear from the original 42-44 somites


Specification and commitment of somitic cell types

Axial specification

Although all the somites look identical, they will form different structures at different positions along the anterior-posterior axis. For instance, the ribs are derived from somites. The somites that form the cervical vertebrae of the neck and the lumbar vertebrae of the abdomen are not capable of forming ribs ribs are generated only by the somites forming the thoracic vertebrae. Moreover, the specification of the thoracic vertebrae occurs very early in development. If one isolates the region of chick segmental plate that will give rise to a thoracic somite, and transplants this mesoderm into the cervical (neck) region of a younger embryo, the host embryo will develop ribs in its neck. Those ribs will form only on the side where the thoracic mesoderm has been transplanted (Figure 14.6 Kieny et al. 1972 Nowicki and Burke 1999). As discussed in Chapter 11 (see Figure 11.41), the somites are specified in this manner according to the Hox genes they express. Mice that are homozygous for a loss-of-function mutation of Hoxc-8 will convert a lumbar vertebra into an extra ribbed thoracic vertebra (see Figure 11.39).

Figure 14.6

The segmental plate mesoderm is determined as to its position along the anterior-posterior axis before somitogenesis. When segmental plate mesoderm that would ordinarily form thoracic somites is transplanted into a region in a younger embryo (caudal to (more. )

Differentiation within the somite

Somites form (1) the cartilage of the vertebrae and ribs, (2) the muscles of the rib cage, limbs, and back, and (3) the dermis of the dorsal skin. Unlike the early commitment of the mesoderm along the anterior-posterior axis, the commitment of the cells within a somite to their respective fates occurs relatively late, after the somite has already formed. When the somite is first separated from the presomitic mesoderm, any of its cells can become any of the somite-derived structures. However, as the somite matures, its various regions become committed to forming only certain cell types. The ventral medial cells of the somite (those cells located farthest from the back but closest to the neural tube) undergo mitosis, lose their round epithelial characteristics, and become mesenchymal cells again. The portion of the somite that gives rise to these cells is called the sclerotome, and these mesenchymal cells ultimately become the cartilage cells (chondrocytes) of the vertebrae and part (if not all) of each rib (Figures 14.2 and 14.7).

Figure 14.7

Diagram of a transverse section through the trunk of a chick embryo on days 2𠄴. (A) The 2-day somite can be divided into sclerotome cells and dermamyotome cells. (B) On day 3, the sclerotome cells lose their adhesion to one another and migrate (more. )

Fate mapping with chick-quail chimeras (Ordahl and Le Douarin 1992 Brand-Saberi et al. 1996 Kato and Aoyama 1998) has revealed that the remaining epithelial portion of the somite is arranged into three regions (Figure 14.7). The cells in the two lateral portions of the epithelium (those regions closest to and farthest from the neural tube) are muscle-forming cells. They divide to produce a lower layer of muscle precursor cells, the myoblasts. The resulting double-layered structure is called the dermamyotome, and the lower layer is called the myotome. Those myoblasts formed from the region closest to the neural tube form the epaxial muscles (the deep muscles of the back), while those myoblasts formed in the region farthest from the neural tube produce the hypaxial muscles of the body wall, limbs, and tongue (Figures 14.7 and 14.8 see Christ and Ordahl 1995 Venters et al. 1999). The central region of the dorsal layer of the dermamyotome is called the dermatome, and it generates the mesenchymal connective tissue of the back skin: the الأدمة. (The dermis of other areas of the body forms from other mesenchymal cells, not from the somites.) The dermamyotome may also produce the distal cartilage of the ribs, its lateral edge producing the most ventral portion of the rib (Figure 14.8 Kato and Aoyama 1998).

Figure 14.8

Myotome derivatives of the mouse embryo. The epaxial muscles form from the region of the dermamyotome closest to the neural tube. The hypaxial muscles form from the region of dermamyotome furthest from the neural tube. The epaxial myotome will form the (more. )


Bone Development

Mesenchymal Condensation

Mesenchyme is the meshwork of embryonic connective tissue from which all other connective tissues of the body are formed, including cartilage and ultimately bone (see Chapter 4 ). Mesenchymal cells migrate to sites of future osteogenesis and there differentiate into osteogenic cells as a result of cellular interactions and locally generated growth factors ( Hall, 1988 ). This local instruction ensures that bone does not generally develop in inappropriate sites.

The first sign of future potential bone formation occurs in the early embryonic period as a localized condensation of the mesenchyme (skeletal blastema). Cellular condensations may arise as a result of either increased mitotic activity or an aggregation of cells drawn towards a specific site ( Hall and Miyake, 1992 ). Such chondrogenic condensations involve multiple signalling molecules including bone morphogenic proteins and transforming growth factor β ( Hall and Miyake, 2000 Long and Ornitz, 2013 ).

As the mesenchyme begins to condense, the cells become more rounded, concomitant with a reduction in the amount of intercellular substance ( Streeter, 1949 ). This stage is referred to as the precartilage blastema ( Hamilton and Mossman, 1972 Glenister, 1976 Atchley and Hall, 1991 ). The formation of mesenchymal condensations has been associated with the formation of gap junctions that permit intercellular communication ( Hall and Miyake, 1992 ). Each cell begins to secrete a basophilic matrix, rich in type II, IX and XI collagen filaments along with other substances including chondroitin sulphate, and aggrecan indicating a differentiation into chondroblasts. As development continues, the levels of hyaluron decrease following an increase in hyaluronidase. Hyaluron blocks chondrogenesis, so its removal permits cellular differentiation ( Knudson and Toole, 1987 ). As the levels of hyaluron decrease, so the levels of chondroitin sulphate increase ( Toole and Trelstad, 1971 ). It appears that hyaluron may be necessary for cellular aggregation and therefore essential for the accumulation of a sufficient number of precartilage cells to initiate the transition from mesenchyme to cartilage ( Grüneberg, 1963 Ogden, 1979 ). A number of factors, such as a mutation or the introduction of a teratogen, may be responsible for the reduction in size of a mesenchymal condensation. If this condensation does not reach a critical size/mass, then the onset of chondrification may be retarded or even aborted. There is a substantial volume of evidence from في المختبر cultures to suggest the requirement of a minimum cell number before prechondrogenic cells can differentiate ( Steinberg, 1963 Flickinger, 1974 Solursh, 1983 ). A similar requirement has also been documented for pre-osteogenic cells ( Thompson وآخرون.، 1989 Nakahara وآخرون.، 1991 ). Interestingly, this may go some way towards an explanation for the phylogenetic loss of certain skeletal structures ( Hall, 1984 ). The embryonic potential to produce certain skeletal structures that will ultimately be suppressed can be retained. For example, snakes retain the mesenchymal condensations that would indicate limb formation. However, they remain small and so may fail to meet the prerequisite cellular quantity threshold so that they ultimately regress. Occasionally, some of these suppressed structures do develop beyond the condensation stage and are then classified as atavistic traits ( Hall, 1984 ). Conversely, should a condensation become excessively large, it can subsequently lead to abnormally large skeletal elements ( Hall and Miyake, 1992 ).

As the tissue continues to mature, there is a continued separation of the cells by matrix deposition and so the tissue soon takes on the appearance of early hyaline cartilage. Gardner (1963) reported that such cellular condensations, which will ultimately lead to cartilage formation, could be distinguished at a very early age from the predominantly fibrous condensations that lead to the formation of intra-membranous bone. This ease of identification is partly due to the early presence of a well-defined perichondrium.


تعريف

Archenteron refers to the rudimentary alimentary cavity of an embryo at the gastrula stage while blastocoel refers to the cavity of a blastula, arising in the course of cleavage. Thus, this is the main difference between archenteron and blastocoel.

Formation

Moreover, archenteron is formed during gastrulation while blastocoel is formed during blastulation.

Segmentation Cavity

Another difference between archenteron and blastocoel is that the archenteron is not a segmentation cavity since it is made up of both endoderm and mesoderm while blastocoel is a segmentation cavity since it separates future endoderm from the inductive influence of the vegetal cells.

أهمية

Furthermore, blastocoel is important for the formation of archenteron while blastocoel is the first cavity formed during the embryonic development.

Give Rise to

Also, archenteron gives rise to the lumen of the digestive tract while blastocoel diminishes in size and eventually fills up with the mesoderm. Hence, this is another difference between archenteron and blastocoel.

استنتاج

Archenteron is a cavity formed during gastrulation, developing into the lumen of the digestive cavity. However, blastocoel is the cavity formed during blastulation. It reduces its size and eventually fills up with mesoderm. Therefore, the main difference between archenteron and blastocoel is their formation and fate.

مراجع:

1. “Archenteron.” The Columbia Encyclopedia, 6th Ed, Encyclopedia.com, 2019, Available Here
2. “Blastula.” Encyclopædia Britannica, Encyclopædia Britannica, Inc., 3 Mar. 2011, Available Here

الصورة مجاملة:

1. “Protovsdeuterostomes” By WYassineMrabetTalk✉This W3C-unspecified vector image was created with Inkscape. – Own work (CC BY-SA 3.0) via Commons Wikimedia
2. “Blastocyst English” By Seans Potato Business (derivative of the source cited above) – Blastocyst.png (CC BY-SA 3.0) via Commons Wikimedia

نبذة عن الكاتب: لاكنه

لاكنا ، خريجة البيولوجيا الجزيئية والكيمياء الحيوية ، هي عالمة أحياء جزيئية ولديها اهتمام واسع وحاد باكتشاف الأشياء ذات الصلة بالطبيعة


شاهد الفيديو: Somites u0026 Somitogenesis - Intraembryonic Mesoderm in Third Week - 3D Human Embryology (يوليو 2022).


تعليقات:

  1. Chadbyrne

    يأخذ منعطفًا سيئًا.

  2. Tanguy

    في رأيي ، أنت مخطئ.

  3. Terence

    بيننا نتحدث عن إجابة سؤالك وجدت على google.com

  4. Typhon

    ليس لدي أي شك في ذلك.



اكتب رسالة